22/04/2026
🐩 Impacto del trasplante de microbiota f***l en perros.
Las enteropatías inflamatorias no infecciosas son frecuentes en los entornos veterinarios.
Diversos estudios en humanos y perros han revelado que las enteropatías suelen estar asociadas a alteraciones en las comunidades microbianas f***les. El trasplante de microórganos f***les, obtenidos de donantes clínicamente sanos, a perros con enfermedades crónicas no se practica habitualmente en las pequeñas clínicas veterinarias.
Los objetivos de este estudio piloto fueron evaluar la seguridad y el impacto del trasplante de microbiota f***l en perros que padecen trastornos digestivos no infecciosos.
Evaluación de heces
La consistencia de las muestras f***les se evaluó 4 semanas antes y 4 semanas después del trasplante de microbiota f***l (TMF) mediante el sistema de puntuación f***l de 7 puntos de Nestlé Purina. Estas puntuaciones oscilaron entre 1 (heces muy duras y secas) y 7 (heces líquidas y sin textura).
Se utilizó un enfoque modificado basado en una puntuación clínica para obtener información sobre el índice de actividad del tratamiento. La puntuación total general se clasificó como insignificante (0-3), leve (4-5), moderada (6-8), grave (9-11) y/o muy grave (≥12) (21). Los siguientes criterios se puntuaron de 0 a 3: actividad, apetito, consistencia y frecuencia de las heces, y estado de la piel y el pelaje. Además, se utilizó un panel de evaluación sensorial para valorar el impacto del trasplante de microbiota f***l en la calidad de la piel y el pelaje de los perros.
La calidad general de la piel y el pelaje se clasificó como 1 (mala), 2 (buena), 3 (muy buena) o 4 (excelente). Se evaluaron las diferencias en el brillo (reflejo de luz visual del pelaje), la sensación óptima del pelaje (al tocar la suavidad del pelaje sin sensación grasosa o seca) y la pérdida de pelo (evaluando cinco áreas levantando el pelo).
Recolección de muestras
Se obtuvieron muestras f***les de donantes y receptores (antes y después del trasplante de microbiota f***l) mediante la recolección de muestras durante la defecación espontánea, antes de que las heces cayeran al suelo.
Las muestras f***les se almacenaron a -40 °C después de la flotación f***l y la prueba de Giardia (kit de prueba SNAP Giardia, IDEXX Laboratories, Westbrook, Maine, EE. UU.).
Se extrajeron 5 ml de sangre de la vena yugular externa/interna/común en tubos con EDTA y tubos sin anticoagulantes, utilizando jeringas simples de 5 ml con agujas de calibre 23.
La toma de muestras de sangre y heces se realizó antes (día 0) y después del trasplante de microbiota f***l (días 14 y 28). El recuento diferencial de células sanguíneas se realizó de la siguiente manera: se midieron eritrocitos (ERY), hematocrito (HCT), hemoglobina (HEM), leucocitos (LEU), granulocitos (GRA), linfocitos (LYM), monocitos (MON) y eosinófilos (EOS) (Vet abc Plus+, scil VET).
La evaluación de varios marcadores bioquímicos clave, incluidos la aspartato aminotransferasa (AST), la alanina aminotransferasa (ALT), las proteínas totales (Tprot), la albúmina (Alb) y la globulina (GLB), se determinó en cada muestra de sangre por un laboratorio externo, incluidos los análisis de vitamina B12 (vitB12) sérica.
Transplante
Se diluyeron 90 g de heces del donante y se mezclaron en 100 ml de solución estéril de NaCl al 0,9 % con 30 ml de glicerol estéril al 10 %. Las heces de diferentes donantes no se mezclaron antes del trasplante de microbiota f***l. Cada receptor recibió el trasplante de microbiota f***l de un único donante seleccionado. El contenido final fresco se aspiró en jeringas de 60 ml tras la descongelación y se conectó a un kit de e***a (E***a Set, Plasti-Med Ltd.) para su posterior administración re**al a los pacientes (receptores). Todos los trasplantes se congelaron a -40 °C y se almacenaron durante menos de 28 días antes de su administración.
Los receptores ayunaron durante 8 horas y se les llevó a defecar con frecuencia antes del trasplante de microbiota f***l. Se les realizó un examen clínico poco después de la evacuación intestinal normal.
Posteriormente, se administraron lentamente 120 ml del contenido a temperatura ambiente por vía a**l mediante kits de e***a, sin sedación. Se utilizó un gel lubricante estéril a base de agua (K-Y® Lubricating Jelly) en la punta del bulbo de e***a antes de la administración re**al del trasplante de microbiota f***l. Con la técnica de inserción adecuada, la punta del bulbo se introdujo suavemente de 3 a 5 cm en el recto.
Se elevó suavemente la pelvis de los pacientes (aproximadamente 45°) de la mesa durante 10 minutos para una correcta difusión del contenido. Para favorecer el injerto mucoso adecuado de los microórganos, los receptores permanecieron en observación en una habitación limpia y libre de feromonas durante al menos 30 minutos junto con su dueño. El trasplante de microbiota f***l se realizó dos veces con un intervalo de 14 días.
No se presentaron complicaciones relacionadas con el trasplante de microbiota f***l. Cinco de siete pacientes (71%) mostraron una mejoría en los parámetros f***les asociada a un mejor resultado clínico general, mientras que cuatro de los cinco receptores recuperados (80%) mostraron correlación molecular con la microbiota intestinal del donante tras el trasplante re**al de microbiota f***l. No se observaron cambios significativos en las muestras de sangre a**lizadas convencionalmente. Los niveles séricos de cobalamina mostraron una tendencia al aumento en los receptores recuperados.
